بررسی فراوانی گونه های پرووتلا در زنان با عفونت واژینوز باکتریائی و تعیین مقاومت دارویی آنها | ||
| مجله زنان، مامایی و نازایی ایران | ||
| مقاله 2، دوره 11، شماره 2، تیر 1387، صفحه 7-14 اصل مقاله (140.1 K) | ||
| نوع مقاله: اصیل پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22038/ijogi.2008.5926 | ||
| نویسندگان | ||
| رسول یوسفی مشعوف* 1؛ مرضیه اتوگرا2 | ||
| 1دانشیار گروه میکروبیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی همدان | ||
| 2کارشناس مامایی، دانشکده پرستاری و مامائی، دانشگاه علوم پزشکی همدان | ||
| چکیده | ||
| مقدمه: اخیرا مقاومت دارویی در سه گونه پرووتلا شامل بیویا، دیسینس و ملانینوژنیکوس که در ایجاد عفونتهای دستگاه تناسلی زنان نقش دارند، دیده شد. این تحقیق با هدف بررسی فراوانی واژینوز باکتریائی و تعیین مقاومت دارویی گونه های پرووتلا انجام شد. روش کار: این مطالعه توصیفی بر310 بیمار مبتلا به ترشحات واژنی مراجعه کننده به درمانگاه زنان بیمارستان فاطمی همدان در سال 1383-1384 در تشخیص واژینوز باکتریائی بر اساس 4 شاخص آزمایشگاهی بررسی ترشحات واژن از نظر هموژن یا غیر هموژن بودن، تست ویف، مشاهده کلوسل در اسمیر و تعیین pH صورت گرفت. برای تعیین مقاومت دارویی باکتریها در مورد 9 آنتی بیوتیک روش کربی بائر انجام شد. اطلاعات در پرسشنامه جمع آوری و توسط نرم افزار آماری spssمورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. نتایج: از310 نمونه کلینیکی، 7/65% بیماران دارای واژینوز باکتریائی بودند که 4/47% کلوسل، 2/66% تست ویف مثبت، 1/87% pH بالاتر از 5/4 و 7/67% ترشحات غیر هموژن دیده شد. همچنین در کل تعداد 60 سویه (3/19%) پرووتلا به دست آمد که در80% پرووتلا بیویا، 6/11% پرووتلا دیسینس و 3/8% پرووتلا ملانینوژنیکوس بود. این باکتریها به همراه 4 باکتری رفرانس نسبت به پنی سیلین 100% و نسبت به وانکومایسین و کانامایسین بیش از 60% مقاومت نشان دادند، در حالی که مقاومت نسبت به سفوکستین، کلیندامایسین، مترونیدازول و سیپروفلوکساسین کمتر از 10% بود. نتیجه گیری: فراوانی ابتلا به واژینوز باکتریایی در این بیماران نسبتاً بالاست. شایعترین گونه جدا شده، پرووتلا بیویا و مؤثرترین آنتی بیوتیک بر آن سفوکستین، کلیندامایسین، مترونیدازول و سیپروفلوکساسین بود. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| پرووتلا؛ واژینوز باکتریایی؛ آنتی بیوتیک؛ مقاومت دارویی | ||
| مراجع | ||
|
1- Morton AN, Bradshaw CS, Fairley CK. Changes in the diagnosis and management of bacterial
vaginosis following clinical research.Sex Health 2006; 3(3):183-5.
2- Eschenbach DA. Pelvic infections and sexually transmitted diseases. In: Scott JS, Gibbs RS,
Karlan BY, Haney AF. Danforlh’s obstetrics & gynecology. 9th ed.Lippincott: William &
Wilkins; 2005. 581-604.
3- Holmes KK, Spiegel R, Amesel DA. Eschenbach DA, Chen KC, Totten P. Non specific
vaginosis.Scan.J.Infect.Dis 1981; 26 : 110-114.
4- Amsel R, Totten PA, Spiegel CA, Chen KC, Eschenbach D, Holmes KK. Nonspecific vaginitis:
diagnostic criteria and microbial and epidemiologic associations. Am J Med 1983; 74:14-22.
5- Mashburn J. J Midwifery Womens Health. Etiology, diagnosis, and management of vaginitis.
Womens Health 2006; 51(6):423-30.
6- McCormak WM. Vulvovaginitis and cervicitis. In: Mandell GL, Bennet J.E, Doli R editors.
Principles and practice at infections disease. 6th ed. New york: Churchill Livingstone; 2005.
1357-1371.
7- Rosene K,Eschenbach DA,Tompkins LS,Kenny GE, Watkins H. Polymicrobial early postpartum
ndometritis with facultative and anaerobic bacteria; genital mycoplasmas, and Chlamydia
trachomatis; Treatment whit piperacillin or cefoxitin. J Infect Dis 1986; 153: 1028-1037.
8- Lindner LE, Geerling S, Nettum JA, Miller SL, Altman KH. Clinical characterisitic of women
whit chlamydial cervicitis.J Repord Med 1988; 33(8): 684-90.
9- Shah HN, Collins MD. Proposal to restrict the genus Bacteroides (Castellani and Chalmens) to
Bacteroides fragilis and closely related species. Int J Syst Bacteriol 1989; 39: 85-91.
10- Yousefi Mashouf R, Duerden BI. An identification scheme for oral non-pigmented Prevotella
(Bacteroides) species. Microbial Ecol Health Dis 1992; 5(1): 31-34.
11- Teanpaisan R, Douglas CW, Eley AR, Walsh TF.Clonality of Porphyromonas gingivalis,
Prevotella intermedia and Prevotella nigrescens isolated from periodontally diseased and healthy
sites. J Periodontal Res 1996; 31(6):423-32.
12- Strömbeck L, Sandros J, Holst E, Madianos P, Nannmark U, Papapanou P, et al. Prevotella bivia
can invade human cervix epithelial (HeLa) cells. APMIS 2007;115(3):241-51.
13- Mikamo H, Kawazoe K, Sato Y, Imai A, Tamaya T. Preterm labor and bacterial intra-amniotic
infection: arachidonic acid liberation by phospholipase A2 of Prevotella bivia. Anaerobe 1998;
4(5):209-12
14- Austin MN, Beigi RH, Meyn LA, Hillier SL. Microbiological response to treatment of bacterial
vaginosis with topical clindamycin or metronidazole. J Clin Microbiol 2005; 43(9):4492-7.
15- Behra-Miellet J, Calvet L, Mory F, Muller C, Chomarat M, Bézian MC, et al. Antibiotic
resistance among anaerobic gram negative bacilli: lessons from a French multicentric survey.
Anaerobe 2003; 9:105-111.
16- Beigi, RH, Austin MN, Meyn LA, Krohn MA and Hillier SL. Antimicrobial resistance
associated with the treatment of bacterial vaginosis. Am J Obstet Gynecol 2004; 191:1124-29.
17- Boris, J, Pahlson C, Larsson PG. Six years of observation after successful treatment of bacterial
vaginosis. Infect Dis Obstet Gynecol. 1997; 5:297-302.
18- Bahar H, Torun MM, Demirci M, Kocazeybek B. Antimicrobial resistance and beta-lactamase
production of clinical isolates of prevotella and porphyromonas species. Chemotherapy 2005;
51(1):9-14.
19- Yasin B, Pang M, Lehrer RI, Wagar EA.. Activity of Novispirin G-10, a novel antimicrobial
peptide against Chlamydia trachomatis and vaginosis-associated bacteria. Exp Mol Pathol 2003;
74(2):190-5.
20- Baron EJ, Peterson LR, Finegold SM. Bailey and scott
,
s Diagnostic Microbiology. 9th ed.
Mosby, U.S.A. 1994. 258-71.
21- Bauer AW, Kirby WM ,Sheriss JC. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single
disck method. AM J Clin Patho 1996; 45: 493-96.
22- Fleury FJ. Adult vaginitis. Clin Obset.Gynecol.1981; 24: 407-412.
23- Holmes KK. Sexually transmitted diseases. In: Fauci AS, Braunwald E, Eugene B, Isselbacher
KJ. Harrison`s principles of internal medicine. 16th ed. New York: Mc Graw – Hill; 2005. P.
762-74.
24- Vogel I, Thorsen P, Jeune B, Jacobsson B, Ebbesen N, Arpi M, et al. Acquisition and
elimination of bacterial vaginosis during pregnancy: a danish population-based study. Infect Dis
Obstet Gynecol 2006 ;14(3):946.
25- Jones FR, Miller G, Gadea N, Meza R, Leon S, Perez J, et al. Prevalence of bacterial vaginosis
among young women in low-income populations of coastal Peru. Int J STD AIDS 2007;
18(3):188-92
26- Escenbach DA, Sharon Hilier S, Critchlow C, Penk W. Diagnosis of anaerobic and clinical
manifestations of bacterial vaginosis. Am J Obstet Gynecol 1988; 158: 819-28.
27- Leta Qching, Knneth A, Sorchardt A. 24 hour plastic envelop method for isolation and
identifying Garnerella vaginalis (Pe.Ga). Genitourin Med 1988; 64: 180-84.
28- Pandit DV, Barve SM, Deodhar LP. Biotypes of gardnerella vaginalis isolated from non specific
vaginitis patients in Bombay. Indian J Med Res 1989; 435-38.
29- Demba E, Morison L, Schim van der Loeff M, Awasana A.A, Gooding E, Bailey R, et al.
Bacterial vaginosis, vaginal flora patterns and vaginal hygiene practices in patients presenting
with vaginal discharge syndrome in The Gambia, West Africa. BMC Infect Dis 2005; 5: 12.
30- Taghriri A, Danesh A. Bacterial vaginosis in patients referring to medical centers in Sharekord,
2004-2005. Feyz Winter 2006; 4 (9): 31-34. (Original in Persian)
31- Borjian S, Shojaei H, Shahaniyan M, Deris F. Diagnisis of gardenella associated vaginosis in
Borujen women's outpatients clinic, 2000. Sharekord Un Med ScieJ Winter 2002; 3(4): 38-44.
(Original in Persian)
32- Afrakhteh M, Atossa M. Bacterial vaginosis and urinary tract infection. I J Obstett, Gynecol
Infertil Summer 2006; 9(1): 108-113. (Original in Persian)
33- Centers for Disease Control. Sexually transmitted diseases treatment guidelines. Morb. Mortal
Wkly Rep 2002; 51:42-48.
34- Ednie LM, Credito KL, Khantipong M, Jacobs MR, Appelbaum PC. Synergic activity, for
anaerobes, of trovafloxacin with clindamycin or metronidazole: chequerboard and time-kill
methods. J Antimicrob Chemother 2000; 45(5):633-8.
35- Suzuki Y, Nishinari C, Endo H, Tamura C, Jinbo K, Hiramatsu N, et al. Yearly changes in
antibacterial activities of cefozopran against various clinical isolates between 1996 and 2000--II.
Gram-negative bacteria. Jpn J Antibiot 2002; 55(2):154-80.
36- Mikamo H, Yin XH, Ninomiya M, Tamaya T. In vitro and in vivo antibacterial activities of
telithromycin. Chemotherapy 2003; 49(1-2):62-5.
37- Mikamo H, Sato Y, Hayasaki Y, Kawazoe K, Tamaya T. In vitro activities of pazufloxacin, a
novel injectable quinolone, against bacteria causing infections in obstetric and gynecological
patients. Chemotherapy 1999; 45(3):154-7. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 3,887 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 816 |
||