سامانه مدیریت نشریات علمی دانشگاه علوم پزشکی مشهد

حافظی, حنانه, وحدتی, اکبر, فروزانفر, محسن, شریعتی, مهرداد. (1400). تأثیر رزوراترول و ال کارنیتین بر بیان ژن پروتامین و پارامترهای اسپرم در یک مدل موش آزواسپرمی. , 64(5), 4186-4195. doi: 10.22038/mjms.2021.19852
حنانه حافظی; اکبر وحدتی; محسن فروزانفر; مهرداد شریعتی. "تأثیر رزوراترول و ال کارنیتین بر بیان ژن پروتامین و پارامترهای اسپرم در یک مدل موش آزواسپرمی". , 64, 5, 1400, 4186-4195. doi: 10.22038/mjms.2021.19852
حافظی, حنانه, وحدتی, اکبر, فروزانفر, محسن, شریعتی, مهرداد. (1400). 'تأثیر رزوراترول و ال کارنیتین بر بیان ژن پروتامین و پارامترهای اسپرم در یک مدل موش آزواسپرمی', , 64(5), pp. 4186-4195. doi: 10.22038/mjms.2021.19852
حافظی, حنانه, وحدتی, اکبر, فروزانفر, محسن, شریعتی, مهرداد. تأثیر رزوراترول و ال کارنیتین بر بیان ژن پروتامین و پارامترهای اسپرم در یک مدل موش آزواسپرمی. , 1400; 64(5): 4186-4195. doi: 10.22038/mjms.2021.19852

تأثیر رزوراترول و ال کارنیتین بر بیان ژن پروتامین و پارامترهای اسپرم در یک مدل موش آزواسپرمی

مجله دانشکده پزشکی دانشگاه علوم پزشکی مشهد
مقاله 24، دوره 64، شماره 5، آذر و دی 1400، صفحه 4186-4195    اصل مقاله (1.08 M)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22038/mjms.2021.19852
نویسندگان
حنانه حافظی1؛ اکبر وحدتی* 1؛ محسن فروزانفر1؛ مهرداد شریعتی2
1گروه زیست شناسی،واحد شیراز،دانشکاه آزاد اسلامی،شیراز،ایران
2گروه زیست شناسی،واحد کازرون،دانشگاه آزاد اسلامی،کازرون،ایران
چکیده
عامل ضد سرطان بوسولفان به طرق مختلف از جمله با آسیب رساندن به پارامترهای اسپرم بر سیستم تولید مثل مردان تأثیر منفی می گذارد. تحقیقات نشان می دهد ال-کارنیتین و رزوراترول می توانند عوارض جانبی بوسولفان را کاهش دهند. این مطالعه با هدف بررسی اثرات این عوامل بر پارامترهای اسپرم بیضه و بیان ژن پروتامین در مدل موش آزواسپرمی انجام شد. در مجموع 78 موش نر Sprague Dawley در این مطالعه وارد شدند و به شش گروه سیزده موش تقسیم شدند: گروه شاهد ، ال کارنیتین به علاوه رزوراترول (L-ca + RES) ، بوسولفان BUS) )، بوسولفان به علاوه ال کارنیتین (BUS + L-ca) )، بوسولفان به علاوه رزوراترول (BUS + RES) ) و بوسولفان به علاوه ال کارنتین به علاوه (BUS + L-ca + RES) . پس از 48 روز ، پارامترهای اسپرم و بیان پروتامین بررسی شد. نتایج نشان داد که بهبود قابل توجهی در معیارهای اسپرم از جمله افزایش تحرک اسپرم ، زنده ماندن ، شمارش و میزان بیان پروتامین و همچنین کاهش مورفولوژی غیر طبیعی و درصد اسپرم نابالغ پس از درمان با L-ca و RES در مقایسه با درمان BUS وجود دارد. در نتیجه ، درمان با L-ca ، RES و ترکیب آنها پس از تجویز BUS ممکن است برای کاهش عوارض جانبی BUS در باروری مردان با بهبود کیفیت اسپرم مفید باشد. علاوه بر این ، داده های ما نشان داد که ترکیب L-ca + BUS + RES در تنظیم اثرات سیتوتوکسیک بوسولفان موثرتر است.
کلیدواژه‌ها
رزوراترول؛ ال کارنیتین؛ ژن پروتامین؛ تحرک؛ موش صحرایی
مراجع
  1. Iwamoto T, Hiraku Y, Oikawa S, Mizutani H, Kojima M, Kawanishi S. DNA intrastrand cross‐link at the 5′‐GA‐3′ sequence formed by busulfan and its role in the cytotoxic effect. Cancer science. 2004;95(5):454-8.
  2. Houot M, Poinsignon V, Mercier L, Valade C, Desmaris R, Lemare F, et al. Physico-chemical stability of busulfan in injectable solutions in various administration packages. Drugs in R&D. 2013;13(1):87-94.
  3. Jung S-W, Kim H-J, Lee B-H, Choi S-H, Kim H-S, Choi Y-K, et al. Effects of Korean Red Ginseng extract on busulfan-induced dysfunction of the male reproductive system. Journal of ginseng research. 2015;39(3):243-9.
  4. Ghasemi M, Bahadori M, Faghani M, Nasiri E, Soleimani Rad J. Buserelin inhibits apoptosis in male germ cells induced by busulfan in mouse testis. J Iran Anat Sci. 2009;7:45-54.
  5. Mertins SD, Myers TG, Holbeck SL, Medina-Perez W, Wang E, Kohlhagen G, et al. In vitro evaluation of dimethane sulfonate analogues with potential alkylating activity and selective renal cell carcinoma cytotoxicity. Molecular cancer therapeutics. 2004;3(7):849-60.
  6. ABIDEMI AA. Protective effect of Tahitian Noni juice on the reproductive functions of Male Wistar Rats traeted with cyclophosphamide. Iranian Journal of Pharmacology and Therapeutics. 2011;10(1):39-0.
  7. Li B, He X, Zhuang M, Niu B, Wu C, Mu H, et al. Melatonin ameliorates busulfan-induced spermatogonial stem cell oxidative apoptosis in mouse testes. Antioxidants & redox signaling. 2018;28(5):385-400.
  8. Tunc O, Thompson J, Tremellen K. Improvement in sperm DNA quality using an oral antioxidant therapy. Reproductive biomedicine online. 2009;18(6):761-8.
  9. De Iuliis GN, Thomson LK, Mitchell LA, Finnie JM, Koppers AJ, Hedges A, et al. DNA damage in human spermatozoa is highly correlated with the efficiency of chromatin remodeling and the formation of 8-hydroxy-2′-deoxyguanosine, a marker of oxidative stress. Biology of reproduction. 2009;81(3):517-24.
  10. Shamsi M, Kumar R, Dada R. Evaluation of nuclear DNA damage in human spermatozoa in men opting for assisted reproduction. Indian Journal of Medical Research. 2008;127(2).
  11. Tanaka H, Baba T. Gene expression in spermiogenesis. Cellular and Molecular Life Sciences CMLS. 2005;62(3):344-54.
  12. Nashtaei MS, Nekoonam S, Naji M, Bakhshalizadeh S, Amidi F. Cryoprotective effect of resveratrol on DNA damage and crucial human sperm messenger RNAs, possibly through 5′ AMP-activated protein kinase activation. Cell and tissue banking. 2018;19(1):87-95.
  13. Agarwal A, Said TM. Carnitines and male infertility. Reproductive biomedicine online. 2004;8(4):376-84.
  14. Ng CM, Blackman MR, Wang C, Swerdloff RS. The role of carnitine in the male reproductive system. Annals of the New York Academy of Sciences. 2004;1033(1):177-88.
  15. Abdelrazik H, Agarwal A. L-carnitine and assisted reproduction. Arch Med Sci. 2009;5:43-7.
  16. Kanter M, Topcu-Tarladacalisir Y, Parlar S. Antiapoptotic effect of L-carnitine on testicular irradiation in rats. Journal of molecular histology. 2010;41(2-3):121-8.
  17. Shin S, Jeon JH, Park D, Jang M-J, Choi JH, Choi B-H, et al. trans-Resveratrol relaxes the corpus cavernosum ex vivo and enhances testosterone levels and sperm quality in vivo. Archives of pharmacal research. 2008;31(1):83-7.
  18. Frémont L. Biological effects of resveratrol. Life sciences. 2000;66(8):663-73.
  19. Juan ME, Gonzalez-Pons E, Munuera T, Ballester J, Rodriguez-Gil JE, Planas JM. trans-Resveratrol, a natural antioxidant from grapes, increases sperm output in healthy rats. The Journal of nutrition. 2005;135(4):757-60.
  20. Turedi S, Yulug E, Alver A, Kutlu O, Kahraman C. Effects of resveratrol on doxorubicin induced testicular damage in rats. Experimental and toxicologic pathology : official journal of the Gesellschaft fur Toxikologische Pathologie. 2015;67(3):229-35.
  21. Jabbari M, Talebi-Taher M, Ariafar M. L-Carnitine and its Protective Role in Contrast-Induced Renal Injury in Rats. Journal of Ardabil University of Medical Sciences. 2012;12(2):115-21.
  22. Karbalay‐Doust S, Noorafshan A, Ardekani FM, Mirkhani H, Baker G. The reversibility of sperm quality after discontinuing nandrolone decanoate in adult male rats. Asian journal of andrology. 2007;9(2):235-9.
  23. Dehghani F, Hassanpour A, Poost-pasand A, Noorafshan A, Karbalay-Doust S. Protective effects of L-carnitine and homogenized testis tissue on the testis and sperm parameters of busulfan-induced infertile male rats. Iranian journal of reproductive medicine. 2013;11(9):693.
  24. Kanatsu-Shinohara M, Toyokuni S, Morimoto T, Matsui S, Honjo T, Shinohara T. Functional assessment of self-renewal activity of male germline stem cells following cytotoxic damage and serial transplantation. Biology of reproduction. 2003;68(5):1801-7.
  25. Anjamrooz SH, Movahedin M, Mowla SJ, Pour Bairanvand S. Assessment of morphological and functional changes in the mouse testis and epididymal sperms following busulfan treatment. Iranian biomedical journal. 2007;11(1):15-22.
  26. Kawashima A, Osman BA, Takashima M, Kikuchi A, Kohchi S, Satoh E, et al. CABS1 is a novel calcium-binding protein specifically expressed in elongate spermatids of mice. Biology of reproduction. 2009;80(6):1293-304.
  27. Turner TT, Lysiak JJ. Oxidative stress: a common factor in testicular dysfunction. Journal of andrology. 2008;29(5):488-98.
  28. Aliabadi E, Mehranjani MS, Borzoei Z, Talaei-Khozani T, Mirkhani H, Tabesh H. Effects of L-carnitine and L-acetyl-carnitine on testicular sperm motility and chromatin quality. Iranian journal of reproductive medicine. 2012;10(2):77.
  29. HOSSEINI AN, Khaki A, Akbari G, GHAFFARI NM. The effect of busulfan on body weight, testis weight and MDA enzymes in male rats. 2014.
  30. Mirhoseini M, Saki G, Hemadi M, Khodadadi A, Asl JM. Melatonin and testicular damage in busulfan treated mice. Iranian Red Crescent Medical Journal. 2014;16(2).
  31. Abd‐Elrazek A, Ahmed‐Farid O. Protective effect of L‐carnitine and L‐arginine against busulfan‐induced oligospermia in adult rat. Andrologia. 2018;50(1):e12806.
  32. Vahdati A, Fathi AR, Nasimi P, Saki G. Busulfan induces apoptotic and cytotoxic effects on testis and epididymal sperm of adult male mouse following low dose treatment. Int J Bio. 2015;5:70-8.
  33. Wu C, Zhang Y, Shen Q, Zhou Z, Liu W, Hua J. Resveratrol changes spermatogonial stem cells (SSCs) activity and ameliorates their loss in busulfan-induced infertile mouse. Oncotarget. 2016;7(50):82085.
  34. Avdatek F, Birdane Y, Türkmen R, Demirel H. Ameliorative effect of resveratrol on testicular oxidative stress, spermatological parameters and DNA damage in glyphosate‐based herbicide‐exposed rats. Andrologia. 2018;50(7):e13036.
  35. Dokmeci D. Oxidative stress, male infertility and the role of carnitines. Folia medica. 2005;47(1):26-30.
  36. Ourique GM, Pês TS, Saccol EM, Finamor IA, Glanzner WG, Baldisserotto B, et al. Resveratrol prevents oxidative damage and loss of sperm motility induced by long-term treatment with valproic acid in Wistar rats. Experimental and Toxicologic Pathology. 2016;68(8):435-43.
  37. AbuMadighem A, Solomon R, Stepanovsky A, Kapelushnik J, Shi Q, Meese E, et al. Development of spermatogenesis in vitro in three-dimensional culture from spermatogonial cells of busulfan-treated immature mice. International journal of molecular sciences. 2018;19(12):3804.
  38. Ni K, Spiess AN, Schuppe HC, Steger K. The impact of sperm protamine deficiency and sperm DNA damage on human male fertility: a systematic review and meta‐analysis. Andrology. 2016;4(5):789-99.
  39. Rogenhofer N, Dansranjavin T, Schorsch M, Spiess A, Wang H, von Schönfeldt V, et al. The sperm protamine mRNA ratio as a clinical parameter to estimate the fertilizing potential of men taking part in an ART programme. Human Reproduction. 2013;28(4):969-78.
  40. Shi J-Z, Zhang S-S, Zhang Z, Liang Q, Shi Y, Hua J-L, et al. Expressions of sperm-specific genes in carnitine-cultured testis sperm of obstructive azoospermia patients. Zhonghua nan ke xue= National journal of andrology. 2010;16(6):504-9.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 924
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 554